胡黄连对缺血再灌注脑组织胶质源神经营养因子的影响

【摘要】  　　目的 观察缺血再灌注大鼠脑内胶质源神经营养因子（GDNF）及GDNF mRNA的变化，探讨胡黄连对神经元的保护作用。方法 成年健康雄性Wistar大鼠36只，应用线栓法制作脑缺血再灌注模型，用胡黄连甲醇提取物灌胃治疗后，免疫组织化学染色法观察皮质、纹状体GDNF蛋白表达，原位杂交方法观察其mRNA表达。结果 模型组缺血侧皮质区于缺血再灌1 d时GDNF蛋白、GDNF mRNA表达至高峰，与假手术组比较差异有显著性（F=14.168、40.189，q=12.565～16.847，P<0.01），14 d降至基础水平；纹状体区于缺血再灌3 d时GDNF蛋白、GDNF mRNA表达至高峰，与假手术组比较有显著性差异（F=12.531、113.312,q=11.379～12.565,P<0.01），14 d降至基础水平；胡黄连组缺血再灌注14、21 d时GDNF蛋白、GDNF mRNA表达与手术组及假手术组比较升高，有显著性差异（q=16.847～30.079，P<0.01)。结论 胡黄连对脑缺血再灌注损伤神经元有保护作用，其机制可能与上调脑内GDNF表达有关。  医学职称论文发表 医学论文发表网 医药论文发表 医学论文发表网站 医学论文发表期刊
【关键词】  胡黄连 脑缺血再灌注 胶质源性神经营养因子 大鼠 Wistar
　　［ABSTRACT］ Objective To observe the expression of glial derived neurotrophic factor (GDNF) and GDNF mRNA in cerebral tissue after reperfusion of focal cerebral ischemia, and to elucidate picrorhizae in the protection of neuron. Methods Ischemic reperfusion models were established with intraluminal thread method in 36 adult healthy male Wistar rats. The rats in model group were given intragastric administration with picrorhizae, the expressions of GDNF and GDNF mRNA in cortex and striatum were determined respectively by immunohistochemical and in situ hybridization assay. Results In model group, the GDNF and GDNF mRNA positive neurons increased from 6 h, peaked at 1 d in cortex and peaked at 3 d in striatum. Compared with operation group and sham?operation group, the expressions of GDNF and GDNF mRNA increased insignificantly in treatment group. Conclusion Picrorhizae could protect the neurons against cerebral hypoxia?ischemic damage by increasing the expressions of GDNF and GDNF mRNA.
    
　　［KEY WORDS］ Picrorhizae; Ischemic reperfusion; Glial?derived neurotrophic factor; Rats, Wistar
    
　　神经营养因子及其受体可保护神经元，对抗低氧、兴奋性氨基酸、自由基、细胞内钙超载等病理改变。因此，提高内源性神经营养因子表达，促进半暗带神经元存活对脑卒中功能恢复有积极意义。最近研究表明，中药胡黄连甲醇提取物具有抗氧化和清除自由基的作用，在体外实验中可提高神经元存活率，增强神经生长因子诱导PC12 神经细胞轴突生长[1]。本研究建立大鼠大脑中动脉缺血再灌注模型，观察胡黄连甲醇提取物对脑缺血再灌后神经元损伤的作用。现报告如下。
　　1  材料和方法
　　1.1  动物和分组
    
　　健康雄性Wistar大鼠36只，清洁级，由山东大学动物实验中心提供，3～4月龄，体质量为(246±15)g。常规饲养，环境温度22 ℃。随机分为3组，模型组24只，治疗组8只，假手术组4只。应用改良线栓法[2]，经左侧颈外?颈内动脉插线建立大脑中动脉闭塞（MCAO）再灌注模型，模型成功的标志为动物苏醒后出现左侧Horner征，提尾右前肢内收屈曲，爬行时右侧划圈。模型组又分为缺血1.5 h再灌注6 h、1 d、3 d、7 d、14 d、21 d组，每组4只；治疗组又分为缺血1.5 h再灌注14、21 d组；假手术组仅插入尼龙线10 mm，其余步骤同模型组。
　　1.2  实验方法
　　1.2.1  给药方法  模型组及假手术组大鼠每天给予生理盐水灌胃1次，每次3 mL；治疗组每天灌胃胡黄连甲醇提取物(1 g/L)1次，每次3 mL。
　　1.2.2  脑组织取材  应用10 g/L戊巴比妥钠麻醉大鼠，暴露心脏，先以生理盐水200 mL经升主动脉冲洗，再以40 g/L多聚甲醛200～300 mL灌注固定，持续30　min后取脑备用。取材范围为前囟后2.0 mm至前囟前3.0 mm。脑组织常规脱水、透明、浸蜡、石蜡包埋，连续冠状切片（片厚5 μｍ），粘于用多聚赖氨酸处理的切片上，室温保存备用。
　　1.2.3  GDNF蛋白检测  采用免疫组化方法。兔抗鼠GDNF一抗和SABC免疫组织化学试剂盒均由武汉博士德生物工程有限公司提供。按说明书操作，一抗浓度为1∶100，DAB显色，细胞浆中出现棕黄色颗粒为阳性着色，镜下根据细胞着色情况控制反应时间，室温下约5～8 min，双蒸水冲洗终止反应；脱水、透明；中性树胶封片；免疫组化阳性细胞计数。以0.1 mol/L PBS代替一抗作为阴性对照。
　　1.2.4  GDNF mRNA检测  采用原位杂交方法。GDNF mRNA原位杂交试剂盒由武汉博士德生物工程有限公司提供。按说明书操作，标本切片，脱蜡，梯度乙醇水化至水；依次滴加H2O2、胃蛋白酶、预杂交液、杂交液、生物素化鼠抗地高辛、SABC后，DAB显色，镜下根据细胞着色情况控制反应时间，双蒸水冲洗终止反应；脱水，透明，封片。光镜下观察，细胞浆出现棕黄色颗粒为阳性细胞。取部分切片不加探针以0.1 mol/L PBS代替作为阴性对照。
　　1.2.5  结果观察  参考PAXINOS和WATSON的大鼠脑图谱，光学显微镜下(400倍)观察皮质、纹状体区GDNF蛋白及GDNF mRNA阳性细胞的数量，采用德国欧波同公司VIDAS图像分析系统将每个标本的图像输入电脑，对阳性细胞作吸光度扫描,获得吸光度值。
　　1.3  统计学处理
    
　　结果以±s表示，采用SPSS 10.0统计软件进行数据处理，数据间比较采用方差分析。
　　2  结果
　　2.1  缺血侧皮质、纹状体区GDNF蛋白的表达
    
　　与假手术组比较, 模型组缺血侧皮质区GDNF蛋白表达阳性细胞于缺血再灌注6 h后着色开始加深，1 d时达到高峰，与假手术组比较差异有显著性（F=14.168,q=12.565，P<0.01），之后表达逐渐减弱，14 d降至基础水平；纹状体区GDNF蛋白表达阳性细胞于缺血再灌注1 d后着色开始加深，3 d达高峰，与假手术组相比较，差异均有显著意义（F=12.531,q=11.379，P<0.01），之后表达逐渐减弱，14 d 降至基础水平。治疗组缺血侧皮质区GDNF蛋白表达阳性细胞含量于缺血再灌注14、21 d时明显高于假手术组和相应模型组, 差异有显著性（q=4.908、4.319，P<0.05）；治疗组缺血侧纹状体区GDNF蛋白表达阳性细胞含量于缺血再灌注14、21 d时明显高于假手术组和相应模型组, 差异有显著性（q=5.172、4.345，P<0.05 ）。见表1。
　　2.2  缺血侧皮质、纹状体区GDNF mRNA的表达
    
　　假手术组大鼠脑皮质区和纹状体区GDNF mRNA表达的时相变化规律与GDNF蛋白表达基本相似，模型组缺血侧皮质区于缺血再灌注6 h后阳性细胞着色开始加深，1 d时达到高峰，其值与假手术组大鼠比较差异有显著意义（F=40.189，q=16.847，P<0.01），之后表达逐渐减弱，14 d降至基础水平；纹状体区GDNF mRNA表达阳性细胞于缺血再灌注1 d后着色开始加深，3 d达高峰，与假手术组相比较，差异有显著意义（F=113.312，q=30.079，P<0.01），之后表达逐渐减弱，14 d降至基础水平。治疗组大鼠缺血侧皮质区GDNF mRNA反应阳性细胞含量于缺血再灌注14、21 d均明显高于假手术组和模型组，差异有显著意义（q=0.003、0.031，P<0.05、0.01）；治疗组大鼠缺血侧纹状体区GDNF mRNA反应阳性细胞含量于缺血再灌注14、21 d时明显高于假手术组和相应模型组, 差异有显著性（q=5.013、3.731，P<0.05、0.01）。见表2。3  讨论
    
　　GDNF是转化生长因子家族的新成员之一[3]，属半胱氨酸蛋白家族，是一糖基多肽。GDNF是多巴胺能神经元存活和分化的高特异性营养因子，同时对海马锥体细胞、外周运动神经元亦有保护作用。在新生鼠的海马、纹状体、皮质、小脑区均有GDNF mRNA的较高表达，提示在发育过程中GDNF对这些区域的神经元有支持作用；在成年鼠中，GDNF mRNA表达较低，但当脑内稳态环境改变，如缺血损伤时，可诱导GDNF mRNA在一些脑区表达增加，特别是在对缺血损伤相对耐受的脑区其表达明显高于易损脑区，提示GDNF对缺血神经元的损伤有保护作用。研究发现，大鼠海马内注入GDNF后，缺血诱发的酪氨酸羟化酶（TH）mRNA水平降低，认为GDNF可通过调节TH mRNA及其蛋白水平实现神经保护作用[4]。重组人类GDNF诱发促细胞分裂剂激活性蛋白激酶(MAPK)途径的活化,减少了NMDA引发的钙内流,从而发挥神经保护作用。GDNF可减小脑缺血后的梗死面积和脑水肿, 减轻DNA断裂及天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶免疫阳性反应[5]。MIYAZAKI等[6]则观察到，GDNF可减少短暂性前脑缺血模型中的迟发性神经元死亡。 
　　表1  缺血侧皮质、纹状体区GDNF蛋白表达（略）
　　与假手术组相比，F=14.168、12.531，*q=11.379～12.565，P<0.01；与模型组相比，△q=4.345～5.172，P<0.05
　　表2  缺血侧皮质、纹状体区GDNF mRNA表达（略）
　　与假手术组相比，F=40.189、113.312，*q=16.847～30.079，P<0.01；与模型组相比，△q=0.003～5.013，P<0.05
　　本实验利用大鼠大脑中动脉缺血再灌注模型观察到，缺血再灌注6 h后GDNF蛋白表达阳性细胞着色开始加深，皮质区于1 d时达高峰，纹状体区于3 d达高峰；缺血再灌后皮质区和纹状体区GDNF mRNA表达的时相变化规律与GDNF蛋白表达基本相似，支持GDNF对缺血神经元的损伤有保护作用的观点。但是本文也同时观察到，脑缺血诱导的GDNF表达增加时程短, 再灌注14 d降至基础水平，难以对受损神经元起到全面而持久的保护作用。
    
　　胡黄连为我国传统中药，主要生物活性成分是环烯醚萜甙类。LI等[7]报道，环烯醚萜甙类化合物具有增强神经生长因子诱导PC12神经细胞轴突生长的作用。陶移文等[1]通过建立神经细胞自由基损伤模型观察到，胡黄连苷?Ⅱ可提高PC12神经细胞的存活率，减少乳酸脱氢酶（LDH）的释放量,降低细胞内活性氧水平，对PC12 神经细胞损伤具有明显的保护作用。张伟等[8]通过建立大鼠大脑中动脉缺血再灌注模型观察到，胡黄连可下调脑内NMDA R1 mRNA表达，从而减轻兴奋性氨基酸的神经毒性，起到神经保护作用。本文观察了中药胡黄连甲醇提取物对缺血再灌大鼠脑GDNF表达的影响，结果表明，治疗组缺血侧皮质区和纹状体区GDNF蛋白表达阳性细胞含量于再灌注后14、21 d均明显高于假手术组和模型组，差异有显著性；皮质区和纹状体区GDNF mRNA表达阳性细胞含量于14、21 d均明显高于假手术组和模型组，差异有显著性。提示胡黄连促进缺血再灌注后较长时程内GDNF的合成是其神经保护作用的机制之一。
【参考文献】
  　　[1]陶移文,刘建文,魏东芝,等. 胡黄连苷?Ⅱ在体外对PC12 神经细胞损伤的保护作用[J]. Chin J Clin Pharmacol Ther, 2003,8(1):27?30.
　　[2]LONGA E Z, WEISTEIN P R, CARISON S, et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats [J]. Stroke, 1989,20(1):84?90.

　　[3]SCHALLER B. Prospects for the future: the role of free radicals in the treatment of stroke[J]. Free Radic Biol Med, 2005,38(4):411?425.

　　[4]MIYAZAKI H, ONO T, OKUMA Y, et al. Glial cell line?derived neurotrophic factor modulates ischemia?induced tyrosine hydroxylase expression in rat hippocampus[J]. Eur J Neurosci, 2000,12(6):2032?2038.

　　[5]KITAGAWA H, ABE K, HAYASHI T, et al. Ameliorative effect of glial cell line derived neurotrophic factor on brain demaformation after permanent middle cerebral artery occlusion in rats[J]. Neurol Res, 1998,20(4):333?336.

　　[6]MIYAZAKI H, OKUMA Y, FUJII Y, et al. Glia cell line derived neurotrophic factor protects against delayed neuronal death after transient fore brain ischemia in rats[J]. Neuroscci, 1999,89(3):643?647.

　　[7]LI P, MATSUNAGA K, YAMAKUNI T, at al. Picrosides Ⅰ and Ⅱ, selective enhancers of the mitogen?activated protein kinase?dependent signaling pathway in the action of neuritogenic substances on PC12D cells[J]. Life Sci, 2002,71(15):1821?1835.

　　[8]张伟,银建军. 胡黄连对缺血再灌注大鼠脑内NMDAR1 mRNA表达的影响[J]. 青岛大学医学院学报, 2006,42(1)：24?25.